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口蹄疫病毒通用型(FMDV-U)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光 RT-PCR 法)
點(diǎn)擊次數(shù):220 更新時(shí)間:2024-07-15
口蹄疫病毒通用型(FMDV-U)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光 RT-PCR 法)
【產(chǎn)品名稱(chēng)】
商品名稱(chēng):口蹄疫病毒通用型(FMDV-U)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光 RT-PCR 法)
【包裝規(guī)格】 50T/盒
【貨
號(hào)】 XC-2010
【預(yù)期用途】
本試劑盒適用于檢測(cè)的扁桃體、淋巴結(jié)等組織病變部與健康部交界處組織、全血等標(biāo)本中口蹄疫病毒 RNA, 適用于口蹄疫病毒感染
的輔助診斷。
【檢驗(yàn)原理】
本試劑盒采用 TaqMan 探針?lè)▽?shí)時(shí)熒光 RT-PCR 技術(shù),通過(guò)設(shè)計(jì) 1 對(duì)口蹄疫病毒特異性引物,結(jié)合 1 條特異性探針,用熒光 RT-PCR
技術(shù)對(duì)口蹄疫病毒核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè), 用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。
【試劑組成】
稱(chēng)
規(guī)
酶液
50μL×1 管
FMDV-U 反應(yīng)液
950uL×1 管
FMDV-U 陽(yáng)性質(zhì)控品
50μL ×1 管
陰性質(zhì)控品
50μL ×1 管
備注:不同批號(hào)的試劑盒組分不宜交叉使用。
【儲(chǔ)存條件及有效期】
-20℃±5℃, 避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融≤5 次, 有效期 12 個(gè)月。
【適用儀器】
ABI 系列 、安捷倫 MX3000P/3005P、Bio-Rad 等系列熒光定量 PCR 檢測(cè)儀。
【標(biāo)本采集】
病死或撲殺豬,取分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等
【保存和運(yùn)輸】
上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃, 長(zhǎng)期保存可置-70℃,但不能超過(guò) 6 個(gè)月, 標(biāo)本運(yùn)送應(yīng)采用2~8℃冰袋運(yùn)輸, 嚴(yán)禁反復(fù)凍融。
【使用方法】
1. 樣品處理(樣本處理區(qū))
1.1 樣本前處理
組織樣品: 每份組織分別從 3 個(gè)不同的位置稱(chēng)取樣品約 1g, 手術(shù)剪剪碎混勻后取 0.5g于研磨器中研磨, 加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)
研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中, 8000rpm 離心 2min, 取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中; 全血樣本:待血凝固后,
取血清 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。
1.2
RNA 提取
推薦采用深圳市迅測(cè)生物科技有限公司生產(chǎn)的 RNA 提取試劑盒(離心柱提取法/磁珠法),請(qǐng)按照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。
2. 試劑配制(試劑準(zhǔn)備區(qū))
根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù), 設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1管陰性對(duì)照+1管陽(yáng)性對(duì)照,每個(gè)測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表:
試劑
FMDV-U 反應(yīng)液
酶液
用量(樣本數(shù)為 N)
19μL
1μL
3. 加樣(樣本處理區(qū))
將步驟 1 提取的 RNA、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 5μL, 分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。
4. PCR 擴(kuò)增(核酸擴(kuò)增區(qū))
4.1將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi);
4.2設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為25μL;
熒光通道選擇: 檢測(cè)通道選擇 CY5 檢測(cè), 淬滅通道選擇 NONE, 參比熒光選 NONE。
4.3推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:
步驟
循環(huán)數(shù)
溫度
時(shí)間
收集熒光信號(hào)
1
1 cycle
50℃
15min
2
1 cycle
95℃
3min
3
45cycles
95℃
15sec
55℃
30sec
5. 結(jié)果分析判定
5.1 結(jié)果分析條件設(shè)定
設(shè)置 Baseline 和 Threshold: 一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析,當(dāng)曲線(xiàn)出現(xiàn)整體傾斜時(shí),根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的start
值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動(dòng)閾值線(xiàn)至高于陰性對(duì)照),
重新分析結(jié)果。
5.2 結(jié)果判斷
陽(yáng)性:檢測(cè)通道 Ct 值≤38.0, 且曲線(xiàn)有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線(xiàn)。
可疑:檢測(cè)通道 Ct 值>38.0, 且出現(xiàn)典型擴(kuò)增曲線(xiàn)的樣本建議重復(fù)試驗(yàn),重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn) Ct 值≤38.0 和典型擴(kuò)增曲線(xiàn)者為陽(yáng)性,
否則為陰性。
陰性:樣本檢測(cè)結(jié)果無(wú) Ct 值且無(wú)明顯的擴(kuò)增曲線(xiàn)。
6. 質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)
陰性質(zhì)控品:無(wú)明顯擴(kuò)增曲線(xiàn)或無(wú) Ct 值顯示;
陽(yáng)性質(zhì)控品:擴(kuò)增曲線(xiàn)有明顯指數(shù)生長(zhǎng)期, 且 Ct 值≤30;
以上條件應(yīng)同時(shí)滿(mǎn)足, 否則實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。
7. 檢測(cè)方法的局限性
? 樣本檢測(cè)結(jié)果與樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān);
? 樣本提取過(guò)程中沒(méi)有控制好交叉污染,會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果;
? 陽(yáng)性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏, 會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果;
? 病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;
? 不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;
? 試劑運(yùn)輸,保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果;
? 本檢測(cè)結(jié)果僅供參考, 如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測(cè)手段。
【注意事項(xiàng)】
? 所有操作嚴(yán)格按照說(shuō)明書(shū)進(jìn)行;
? 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化, 完全混勻并短暫離心;
? 反應(yīng)液應(yīng)避光保存;
? 反應(yīng)中管蓋需蓋緊;
? 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專(zhuān)用工作服;
? 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行, 以免交叉污染;
? 實(shí)驗(yàn)完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺(tái)和移液器;
? 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待,并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。

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